Лучшие средства от боли в суставах и остеохондроза

(Проверенно лично нашей редакцией сайта)

1.Пантогор

Пантогор
Гель “Пантогор” - разработка российских ученых, которая успешно лечит заболевания суставов и опорно-двигательного аппарата.
Сам по себе гель эффективно справляется с болью в суставах, снимает воспаление, устраняет отек, восстанавливает подвижность. Такой эффект достигается благодаря уникальной формуле на основе пант алтайского марала
Так же проверенно лично Еленой малышевой.
На сегодняшний момент это лучшее средство..
Подробнее...

2. Крем Здоров

Здоров
В 2016 году, в Научно-исследовательском институте по заболеваниям опорно-двигательного аппарата и костно-мышечной системы успешно закончены клинические испытания третьего поколения - крем-воска ЗДОРОВ®, созданного для борьбы с заболеваниями опорно двигательного аппарата.
Пресс служба института обнародовала следующее: Подробнее...
   

Не получают секрет простаты

Правила забора материала для микробиологического исследования

Биологический материал целесообразно получать до начала антимикробной терапии.

  • Материал для бактериологического исследования берут непосредственно из очага инфекции или исследуют клинически значимый биологический материал. 
  • Необходимо соблюдать асептику, избегая контаминации биологического материала посторонней микрофлорой. 
  • Количество материала должно быть достаточным для проведения исследования. 
  • Собирают материал в стерильную посуду с пробками, полученную в микробиологической лаборатории: для взятия отделяемого из раны, мазков со слизистых оболочек, из глаза, уха, носа, зева, цервикального канала, влагалища, анального отверстия следует использовать стерильные ватные тампоны, для крови, гноя, спинномозговой жидкости и экссудатов используют стерильные шприцы и специализированные транспортные среды, для мокроты, мочи и кала - стерильные плотно закрывающиеся небьющиеся контейнеры.


Внимание: необходимо следить за сроками годности посуды, полученной в лаборатории. Если посуда, стерилизуемая в лаборатории, не использована в срок, указанный на этикетках её необходимо вернуть в лабораторию для повторной стерилизации.

  • Нативный материал доставляют в лабораторию в максимально короткие сроки (для большинства образцов не позднее 1,5-2 ч после их получения). Допускается хранение материала в холодильнике при 4° С (это не относится к биологическому материалу, полученному из стерильных в норме локусов: ликвору, крови, внутрисуставной и плевральной жидкости!). 
  • При использовании транспортных сред биологический материал можно хранить в течение 24 ч. 
  • Жидкий биологический материал можно транспортировать непосредственно в шприце, на кончик которого надет стерильный колпачок или загнутая под углом игла. 
  • Для исследования на анаэробы биологический материал необходимо помещать в анаэробные условия. Для жидких образцов (кровь, гной, экссудат, жидкости из стерильных полостей) используют специальные флаконы с жидкой питательной средой, заполненные газовой смесью определенного состава, куда из шприца уколом иглы через резиновую плотно завальцованную крышку вносят материал. Можно использовать анаэробные коммерческие тампоны с транспортной средой. 
  • Транспортировка осуществляется в металлических биксах (пеналах), термоконтейнерах, которые должны легко подвергаться обработке. 
  • К материалу прилагают сопроводительный до­кумент, где указывают наименование, источник и метод получения биологического материала, дату и время его взятия; ФИО, пол и возраст больного; название учреждения, отделения, № палаты; пред­полагаемый диагноз инфекционной патологии и предшествующую антибактериальную терапию; фамилию и подпись врача, направившего материал для проведения бактериологического исследова­ния.

Внимание: погрешности в правилах сбора материала для микробиологического исследования приводят к ошибкам в диагностике возбудителя и определении его антибиотикочувствительности.

Исследование крови

  • Для взятия крови используют стерильные шприцы или системы для одноразового пользования. 
  • Кровь берут во время подъёма температуры из периферической вены с соблюдением правил асептики и мер индивидуальной защиты, предусмотренных при работе с кровью (использовать резиновые перчатки). 
  • Кровь засевают в питательные среды сразу после взятия у постели больного или процедурной. 
  • Перед использованием флаконов визуально определяют прозрачность среды, любое помутнение свидетельствует об их непригодности. 
  • При подозрении на анаэробную инфекцию необходимо одномоментно собирать кровь в два флакона – с питательными средами для аэробного и анаэробного культивирования. 
  • Не следует брать кровь из сосудистых катетеров, кроме случаев, когда предполагается инфекция катетерного происхождения. 

Забор и посев крови
Для предотвращения контаминации кожу пациента над пунктируемой веной тщательно обработать следующей последовательности:

  • 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком) 
  • 5% настойкой йода (или йодопирона, йодоната, хлоргексидина) начиная обработку от центра будущего прокола к периферии - 30 секунд 
  • этиловым 70% спиртом (или заменяющим его антисептиком) 
  • дают высохнуть обработанному участку кожи 
  • не пальпируя вену повторно, производят венепункцию 
  • вновь обрабатывают участок 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком). 
  • При аллергической реакции на йод кожу дважды обрабатывают 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком). 

Использование сред, приготовленных в лаборатории:
Среды в стеклянных флаконах, закрытые стерильными ватно-марлевыми пробками и предохранительными стерильными бумажными колпачками:
 - двухфазная среда» (комбинация плотной и жидкой среды в одном флаконе) – для роста аэробных микроорганизмов
 - полужидкие специальные среды - для роста анаэробных микроорганизмов

  • Посев осуществляют во флаконы со средами над пламенем спиртовой горелки. 
  • Взятие и посев крови осуществляют два человека – в то время как один обрабатывает кожу пациента, пунктирует вену и берёт кровь, другой - над пламенем спиртовки
  • Открывает пробки флаконов, подставляет флаконы со средой под струю крови из шприца или системы, обжигает горлышки и пробки флаконов и закрывает их. 
  • Рекомендуемое соотношение объёмов крови и среды 1:10 (10 мл у взрослых, 5 мл у детей)

Использование коммерческих сред:
 - для аэробных микроорганизмов (с зелёной крышкой)
 - для анаэробных микроорганизмов (с красной крышкой)
 - педиатрические флаконы – (с жёлтой крышкой) для исследования крови в объёме до 5 мл

  • Снимают предохранительную пластиковую крышку. 
  • Дезинфицируют резиновую пробку флакона 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком). 
  • Дают просохнуть обработанной поверхности. 
  • Прокалывают пробку флакона иглой шприца и производят посев крови. 
  • Объём исследуемой крови по прилагаемой инструкции - обычно 10-30 мл для взрослых и 1- 5 мл для детей до 12 л (метка на этикетке флакона позволяет оценить объём взятой крови). 
  • Сначала производят посев в «анаэробный» флакон, затем – в «аэробный» во избежание попадания воздуха из шприца. 
  • Перемешивают осторожно круговыми движениями содержимое флакона. 
  • Маркируют флаконы и до транспортировки в лабораторию содержат в термостате или при комнатной температуре в защищённом от света месте (не в холодильнике!!) 
  • Исследования крови и других жидкостей организма с помощью анализатора культур крови BacT/ALERT-

При отсутствии в отделении флаконов для гемокультур.

  • В исключительных случаях, при экстренной ситуации допускается использование 20-миллилитрового шприца с иглами. 
  • В шприц предварительно набирают 0,5-0,7 мл стерильного гепарина. 
  • Заменяют иглу. 
  • Затем пунктируют вену, соблюдая правила асептики. Набирают 10-15- мл крови. 
  • Перемешивают осторожным покачиванием с гепарином (иглу со шприца не снимают). 
  • В этом же шприце с согнутой у основания иглой (или надетым стерильным колпачком) немедленно отправляют в лабораторию.

Исследование сосудистого катетера

  • Исследуют при подозрении на инфекцию катетерного происхождения.
  • В асептических условиях отрезают его дистальный (внутрисосудистый) конец около 5 см длиной. 
  • Помещают в стерильный контейнер (пробирку). 
  • Доставляют в лабораторию немедленно. 
  • Важно не допускать высыхания образца. 

Исследование ликвора

  • Спинномозговую жидкость получают при люмбальной пункции или пунции боковых желудочков мозга в объеме 3 -5 мл, помещают в стерильную, желательно центрифужную пробирку и немедленно доставляют в лабораторию.
  • Полученную пробу доставить в лабораторию, избегая чрезмерного перегрева и особенно охлаждения (может быть использован термос). Охлаждение ликвора ниже 300 ведёт к гибели менингококков. 
  • При невозможности немедленно доставить в лабораторию ликвор сохраняют при 370 в термостате. 
  • При использовании коммерческих сред (BacT/ALERTFA и др.) свежевзятый ликвор в количестве 5-10 мл из шприца, проколов резиновую пробку, вносится во флакон со средой (см. исследование крови).

Исследование жидкостей организма из стерильных в норме полостей

  • Исследуют перитонеальную, синовиальную, плевральную, суставную, перикардиальную жидкости. 
  • Для бактериологического исследования используют жидкости, взятые при пункции и аспирации. 
  • Попавшие в шприц пузырьки воздуха удаляют и помещают жидкость в анаэробную транспортную систему или отправляют её в шприце, предварительно сняв (или загнув) иглу или надевают на канюлю защитный стерильный колпачок. 
  • Минимальный объём жидкости для выделения бактерий 1-5 мл, для выделения грибов или микобактерий не менее 10 мл. 
  • Избыток жидкости или гной транспортировать в стерильных контейнерах с завинчивающейся крышкой. 
  • Взятие материала тампоном не предохраняет анаэробы от воздействия кислорода воздуха, не позволяет приготовить качественный препарат для микроскопии, не гарантирует выделение культуры при незначительном количестве микробов в образце. 
  • Не рекомендуется использовать антикоагулянты (цитрат, этилендиаминтетрауксусную кислоту), подавляющие рост некоторых видов бактерий. 
  • При необходимости лучше использовать гепарин. 
  • При достаточном количестве жидкости можно производить посев из шприца во флаконы со средой для гемокультур в соотношении 1:5 - 1:10 (5-10 мл). Однако при этом становится невозможной прямая бактериоскопия материала, а сроки идентификации удлиняются на сутки в сравнении с изолятами, выделенными при первичном посеве на плотные среды.

Исследование материала при раневой инфекции

  • Взятие материала производит лечащий врач во время операции или перевязки. 
  • В большинстве случаев исследуют поражённые ткани и аспираты. 
  • Наиболее правильный способ взятия жидких материалов – объёмно с помощью стерильного шприца. Отбор материала тампоном производят только при невозможности осуществления объёмного метода. 
  • Промыванием раневой поверхности физ. раствором удаляют местно применяемые антисептические и антибактериальные препараты.
  • Кожу вокруг раны обрабатывают спиртом или другим антисептиком, некротические массы, детрит, гной удаляют стерильной сухой салфеткой. 
  • Все ёмкости с отобранным материалом плотно закрывают стерильными пробками. 
  • Доставляют в лабораторию в течение 1 часа. При невозможности доставить материал в течение этого времени, он должен храниться в холодильнике, но не более 2 часов.

Можно использовать специальные транспортные контейнеры и пробирки со средами. На транспортной среде материал хранится 24 часа.

Отделяемое открытых инфицированных ран
Материал берут двумя стерильными тампонами (один для посева, второй - для бактериоскопии) круговыми вращательными движениями от центра к периферии поражённого участка помещают в стерильную пробирку.

Отделяемое из дренажей.

  • Берут стерильным шприцем и в количестве 1-2 мл помещают в стерильную пробирку или доставляют в шприце. 
  • Можно использовать для исследования концы удалённых дренажных трубок 

Кусочки тканей
Помещают в другую плотно закрывающуюся стерильную ёмкость (пробирку), содержащую небольшое количество стерильного физ. раствора.
Глубокие раны или абсцессы.

  • Поверхность раны дезинфицируют 70% этиловым спиртом, затем 1-2% йодным раствором. 
  • Материал берут из глубины, избегая контаминации поверхностной микрофлорой раны. 

Биоптат с ожоговой поверхности
Поверхность раны дезинфицируют и берут образец с помощью пункционной биопсии (3-4 мм) для количественного исследования.
Язвы и узелковые утолщения

  • Пораженную область кожи дезинфицируют, удаляют поверхностный слой и делают соскоб со дна язвы или узелкового утолщения. 
  • Если имеется экссудат, его собирают шпри­цем или стерильным тампоном. 

Раны после укусов

  • Гнойное содержимое из раны получают шприцем после надреза, дренирования или поверх­ностной обработки инфицированной раны. 
  • При свежих укусах бактериологическое ис­следование не проводят, так как в этот период труд­но выделить этиологически значимый микроорга­низм. 

Кости

  • Материал получают при оперативном вмеша­тельстве. Образец помещают в стерильный контей­нер без формалина и других консервантов. 
  • Для предотвращения высыхания образца в контейнер может быть добавлен стерильный физ.­раствор.

Материал при инфекциях верхних дыхательных путей
Образцы из зева

  • Исследуют прежде всего для выявления α-гемолитических стрептококов группы А, H.influenzae( при эпиглотитах).При наличии специфического анамнеза проводят исследование для исключения гонококковой этиологии фарингита. 
  • Не следует брать материал при воспалённом надгортаннике, так как может возникнуть обструкция дыхательных путей! 
  • Мазок из зева следует брать до еды или через 2 - 3 часа после приёма пищи. Перед взятием пробы больному необходимо прополоскать рот тёплой кипячёной водой. 
  • Аккуратно прижимая язык шпателем, вводят стерильный тампон между дужками миндалин и язычком. 
  • Движением тампона вперёд и назад собирают материал с задней поверхности глотки, миндалин и участков воспаления или изъязвления слизистой.
  • Тампон помещают в стерильную пробирку, при необходимости используя транспортную среду. 

Внимание: При взятии пробы со слизистой зева (глотки) нельзя касаться щёк, языка, дёсен, а также собирать слюну.

Взятие материала при исследовании на возбудителей дифтерии.

  • Для взятия материала используют стерильные ватные сухие тампоны. 
  • Материал из ротоглотки и носа берут отдельными тампонами, натощак или не ранее, чем через 2 часа после еды, при хорошем освещении с использованием шпателя, не касаясь тампоном языка, слизистых щек и зубов. 
  • При наличии налетов материал следует брать с границы пораженных и здоровых тканей, слегка нажимая на них тампоном. 
  • Для взятия материала из носа используют один тампон, который вводят сначала в один, а потом в другой носовой ход, не касаясь крыльев носа снаружи 
  • Необходимо обеспечить доставку материала в лабораторию не позднее 2-х часов, а при использовании глицериновых тампонов - в течение 4-х часов. 

Бактериологическое исследование носоглоточной слизи на менингококки

  • Исследуемый материал берут из задней стенки носоглотки натощак или через 3 - 4 часа после еды стерильным ватным тампоном, укрепленным на изогнутой проволоке. 
  • Материал берут с обязательным надавливанием шпателем на корень языка. Тампон вводят концом кверху за мягкое небо в носоглотку и проводят 2 -3 раза по задней стенке. 
  • При извлечении тампон не должен касаться зубов, слизистой щек, языка и язычка. 
  • Материал может быть взят смоченным тампоном, который затем доставляют в лабораторию. 
  • Питательную среду для смачивания тампонов получают в бактериологической лаборатории. Можно использовать специальные транспортные среды. 
  • Полученную пробу доставить в лабораторию, избегая охлаждения

Мазок со слизистой передних отделов полости носа.

  • Исследование обычно проводится для выявления носительства метициллинрезистентных штаммов S.aureus. 
  • Мазок со слизистой носа берут одним стерильным тампоном. 
  • Тампон вводится сначала в здоровую ноздрю до упора на уровне носовой раковины и вращательными движениями собирают материал со слизистой. Повторяют процедуру в другом носовом ходе. 
  • Тампон помещают в стерильную пробирку. 

Аспират из придаточных пазух

  • Исследуют при бактериальных синуситах помимо исследования микрофлоры носовой полости. 
  • Материал отсылают в лабораторию в анаэроб­ной транспортной среде или непосредственно в шприце. 
  • He рекомендуется исследовать промывную жидкость из носоглотки, так как образцы контаминируются нормальной микрофлорой верх­них дыхательных путей, что не позволяет правиль­но трактовать результаты анализа. 
  • При хронических синуситах возможен прицельный забор материала для микробиологического исследования с использованием эндоскопов. 

Исследование отделяемого уха
Жидкость при тимпаноцентезе

  • Исследуют при среднем отите в случаях, если первичная терапия оказалась безуспешной или если тимпаноцентез проводился как лечебная процедура. 
  • Очищают наружный слуховой проход слабым раствором детергента, после прокола барабанной перепонки врач-отоларинголог шприцем собирает жидкость и помещает ее в стерильный контейнер или отправляет в лабораторию в шприце с загнутой иглой или с защитным колпачком. 
  • При невозмож­ности своевременной доставки целесообразно ис­пользовать транспортную среду. 
  • При самопроизвольной перфорации барабан­ной перепонки экссудат собирают стерильным там­поном, используя слуховое зеркало. Однако в этом случае высока вероятность контаминации биологи­ческого материала эндогенной микрофлорой. 

Материал при воспалении наружного уха.

  • Обрабатывают кожу 70% этиловым спиртом и промывают стерильным изотоническим раствором хлорида натрия (физраствором). 
  • Материал из очага берут стерильным ватным тампоном. Тампон помещают в стерильную пробирку. 
  • При поражении среднего и внутреннего уха исследуют пунктаты и материал, полученный во время оперативных вмешательств, собранные в стерильную пробирку или транспортную среду. 

Исследование отделяемого глаз.

  • Накануне, за 6-8 часов (на протяжении ночи, предшествующей забору материала) отменяют все медикаменты и процедуры. 
  • Материал забирают с пораженных мест в разгар воспалительного процесса с соблюдением правил асептики. 

Отделяемое с конъюнктивы

  • Берут стеклянными стерильными палочками или платиновой петлей, предварительно фламбированной в пламени спиртовки и остуженной и погружают в 0,2 % сахарный бульон. 
  • При наличии достаточно обильного гнойного отделяемого использую стерильные ватные тампоны (желательно коммерческие), которыми берут гной с внутренней поверхности нижнего века движением к внутреннему углу глазной щели. 
  • Необходимо следить, чтобы при моргании ресницы не касались тампона (придерживать веки руками) 

Край век.
Корочки гноя удаляют пинцетом. Берут материал из язвочки у основания ресниц.
Роговица.

  • Материал на исследование после обезболивания, можно взять платиновой петлёй или другим подходящим инструментом. 
  • Если пациент применяет контактные линзы, необходимо исследовать их внутреннюю поверхность. 
  • В кабинете врача производят посев на питательный бульон. 
  • Пробы клинического материала доставить в лабораторию не замочив пробки, чтобы не исказить результат исследования.

Материал при инфекциях нижних дыхательных путей

Мокрота.

  • Исследуют свободно откашливаемую мокроту, утреннюю порцию, натощак 
  • Пациент предварительно должен почистить зубы, дёсны, язык, слизистую оболочку щёк зубной щёткой и прополоскать рот кипяченой водой. 
  • Если мокрота отделяется плохо, накануне пациенту дают отхаркивающие средства или проводят ингаляцию физ. раствором. 
  • Мокроту собирают в стерильную посуду с крышкой. 
  • Сроки доставки мокроты в лабораторию не должны превышать 1,5-2 часа от момента её получения (допускается хранение в холодильнике, но не более 6 часов), т.к. задержка ведёт к аутолизу S.pneumoniae, а за счёт размножения бактерий-контаминантов меняется истинное соотношение микрофлоры бронхиального секрета. 

Качество собранной мокроты можно оценить по данным микроскопии нативных мазков по Граму.

При наличии в мазке мокроты более 10 эпителиальных клеток в поле зрения и менее 25 полиморфно-ядерных лейкоцитов (ПЯЛ) при малом увеличении микроскопа (объектив Х10) высока вероятность контаминации образца содержимым полости рта (слюной). Дальнейшее исследование такого материала нецелесообразно, материал необходимо взять повторно.

Трахеобронхиальные смывы

  • Исследуют при отсутствии мокроты или невозможности её выделить естественным путём. 
  • Специальным шприцем в трахею вводят около 10 мл стерильного физ. раствора и собирают откашливаемый смыв в стерильную посуду. 
  • Бронхиальные смывы, в том числе вблизи очага воспаления, могут быть сделаны с помощью бронхоскопа. 
  • Недостатком является очень часто значительное разведение трахеобронхиального содержимого, что снижает возможность выделения бактерий, а концентрация их падает примерно в 100 раз по сравнению с мокротой. 

Плевральная жидкость.

  • Кожу перед пункцией обрабатывают 70% этиловым спиртом, затем спиртовой настойкой йода, затем опять спиртом. 
  • После прокола жидкость собирают шприцем в сте­рильную пробирку и незамедлительно отправляют в лабораторию. 
  • Допускается посев плевральной жидкости (по 5 мл) в аэробные и анаэробные флаконы, ис­пользуемые для исследования крови.

 Моча при инфекциях мочевыводящих путей 

  • Исследуют утреннюю среднюю порцию (10-20мл) сво­бодно выпущенной мочи (за ночь концентрация бактерий в мочевом пузыре возрастает). 
  • Не следует принуждать пациента к приему жидкости для фор­сирования диуреза, так как происходит разбавле­ние мочи и снижение числа бактерий. 
  • Для сбора мочи используют стерильные ём­кости которые закрываются резиновой стерильной пробкой. Нельзя собирать мочу из мочеприемника или судна. 
  • Перед взятием мочи проводят тщательный туалет наружных половых органов с мылом и кипяченой водой во избежание излишней ее контамина­ции при мочеиспускании нормальной микрофло­рой промежности. 
  • Доставка мочи в лабораторию должна осу­ществляться в максимально короткие сроки. Посев следует проводить не позднее 2 ч после взя­тия материала либо в течение 8 ч при условии ее хранения в холодильнике. (При 4°С число бакте­рий в моче обычно остается стабильным в преде­лах 24 ч). 
  • Взятие мочи следует повторить, если нет ус­ловий для ее хранения в холодильнике, и с момента взятия образца прошло более 2 часов, в противном случае результаты анализа могут быть недостовер­ными. 
  • Недопустимо бактериологическое исследова­ние мочи, собранной в течение суток. 
  • Не рекомендуется исследовать мочу, полу­ченную при наличии постоянного катетера 

Материал при инфекциях урогенитального тракта
Исследование отделяемого женских половых органов
Внимание: взятие материала для микробиологического исследования проводит акушер-гинеколог до проведения мануального исследования
Амниотическаю жидкость
Собирают через катетер, либо аспирируют при кесаревом сечении, либо пунктируют плодный пузырь.
Материал из уретры

  • Собирают не ранее, чем через 1 ч по­сле мочеиспускания. 
  • Отделяемое из уретры собирают стерильным ватным тампоном. 
  • Если отделяемое получить не удается, наруж­ное отверстие уретры обмывают мылом и ополаски­вают кипяченой водой, вводят в уретру тонкий сте­рильный «уретральный» тампон на глубину 2-4 см, аккуратно вращают его в течение 2 сек., вынимают, по­мещают в соответствующую транспортную среду и доставляют в лабораторию. 

Материал из вульвы, преддверия влагалища

  • Берут стерильным ватным тампо­ном.
  • При воспалении бартолиниевых желез произ­водят их пункцию. 

Материал из влагалища.
После введения зеркала и подъемника во вла­галище материал собирают стерильным ватным тампоном с заднего свода или с патологически из­мененных участков.
Цервикальный канал.

  • Обнажают шейку матки секрет с помощью зеркал и влагалищную ее часть тщательно обрабатывают ватным тампоном, смоченным стерильным физрас­твором или стерильной водой. 
  • Тонкий стерильный ватный тампон осторожно вводят в цервикальный канал, не касаясь стенок вла­галища, и берут материал. 
  • Для бактериологческого исследования можно использовать соскоб слизистой, полученный при диагностическом выскабливании стенок цервикального канала.

Матка.

  • Правильное взятие материала из матки может быть выполнено только при использовании специальных инструментов типа шприца-аспиратора., имеющего на зонде покрытие. 
  • После прохождения зондом цервикального канала в полость матки раскрывают наружную оболочку зонда и набирают в шприц содержимое матки. 
  • Материал из шприца помещают в стерильную пробирку. 

Придатки матки.
Материал из очага инфекции (гной, экссудат, кусочки ткани) получают при оперативном вмеша­тельстве или при диагностической пункции опухо­левидных образований, проводимой через влага­лищные своды.
Приготовление мазков для микроскопии.

  • Помимо взятия материала на посев врач-гинеко­лог готовит мазки для микроскопии (не менее двух - для окраски по Граму и специальными метода­ми), используя отдельные стерильные тампоны или стерильные гинекологические инструменты. 
  • Предметные стекла, предназначенные для приготовления мазков, маркируют. 
  • Материал равномерно распределяют на пред­метном стекле осторожными движениями, избегая грубого втирания и резких штриховых движений инструментом. 
  • Мазок высушивают при комнатной температу­ре, покрывают чистым предметным стеклом или по­мещают его в чашку Петри и отправляют в лаборато­рию. 
  • Не допускается хранение влажного мазка между двумя стеклами. 

Исследование отделяемого мужских половых органов
Уретра.

  • Материал собирают не ранее 2 часов после мочеиспускания. 
  • Вводят в уретру тонкий стерильный ватный тампон на глубину 2- 4 см, аккуратно вращают его в течение 1-2 сек., вынимают, помещают в транспорт­ную среду и доставляют в лабораторию.

Исследование секрета простаты.

  • Перед отбором проб необходимо тщательно вымыть наружные половые органы и область заднего прохода тёплой водой с мылом, затем сполоснуть тёплой водой. 
  • Проводят массаж простаты через прямую кишку. Материал собирают в стерильную пробирку или стерильным ватным тампоном. 
  • При наличии симптомов острого простатита массаж простаты не проводят. 
  • Для получения более достоверных результа­тов можно дополнить это исследование бактерио­логическим исследованием мочи, полученной пе­ред и сразу после массажа простаты, что позволит выявить источник инфекции. Основным методом лабораторной диагностики простатита, позволяю­щим определить локализацию очага инфекции, яв­ляется метод Meares и Stamey: исследованию под­вергают первую порцию мочи, среднюю порцию мочи, секрет простаты и порцию мочи, полученные после массажа предстательной железы (так назы­ваемая 4-стаканная проба). 
  • Пробы клинического материала доставить в лабораторию не замочив пробки, чтобы не исказить результат исследования.

Придатки яичек.
Материал собирают путем аспирации с помо­щью шприца и иглы.

Язва полового члена.

  • Очищают поверхность язвы тампоном, смо­ченным физ.раствором. 
  • Производят соскоб язвы до появления сероз­ной жидкости. 
  • Стерильной салфеткой удаляют жидкость и органические наслоения (следует из­бегать кровоточивости). 
  • Надавливают у основания язвы до появления прозрачной жидкости, аспирируют ее шприцем с тонкой иглой, закрывают иглу защитным колпач­ком и транспортируют в лабораторию.

Соскобы мочеиспускательного канала, шейки матки для исследования на урогенитальный хламидиоз

  • Соскобы слизистых оболочек мочеиспускательного канала и шейки матки берут одноразовыми стерильными зондами, «щёточками», ложкой Фолькмана или аналогичными инструментами со слегка затуплёнными краями, соблюдая правила асептики и антисептики. 
  • Наружные половые органы дезинфицируют, выделения удаляют тампонами или с помощью аспираторов. 
  • При повышенной чувствительности слизистую оболочку предварительно анестезируют инстилляцией в мочеиспукательный канал 1-2 мл о.5% раствора дикаина. 
  • Соскобы делают из глубины канала(до 6 см), со всех четырёх квадрантов. 
  • Соскобы шейки матки берут после удаления слизистой пробки из глубины её канала, а также из влагалищной части шейки матки. 
  • Соскобы берут осторожно, при лёгком надавливании. В материале должно быть возможно большее количество эпителиальных клеток и минимальное количество слизи, экссудата и примесей крови. 
  • Соскобный материал распределяют тонким слоем на поверхность 8-миллиметровой лунки чистого обезжиренного предметного стекла так, чтобы все стороны тампона соприкасались с поверхностью стекла. 
  • Мазок высушивают на воздухе 20-30 минут. 
  • Допускается хранение мазка на стекле до фиксации 2-3 часа при комнатной температуре. 
  • Мазки фиксируют соответственно методу окраски. 

Материал при исследовании на анаэробы
Общие показания к обследованию: сепсис неясной этиологии, гангрена, абсцессы, флегмона, перитонит, экссудативный плеврит, нагноения ран с подозрением на анаэробную инфекцию, гнойный артрит.
Образцы клинического материала для исследования на анаэробы во избежания контакта с атмосферным воздухом получают при использовании инвазивных методов забора. 

Исследуемые материалы: кровь, плевральная, перитонеальная и сино­виальная жидкости, гной из абсцессов и других закрытых полостей (если объем гноя превышает 2 мл, то в пробирке под резиновой пробкой сохраняются относительно ана­эробные условия в течение нескольких часов), материалы из глубоких отделов свища (после очистки и асептической обработки наружного от­верстия) и ран. 

Если нет возможности использо­вать метод аспирации шприцем, материал берут стерильным ватным тампоном, который помещают в анаэробную транспортную среду сохранения и до транспортировки в лабораторию содержат при ком­натной температуре;
Фрагменты костной и мышечной тканей размером 1x1 см, взятые из глубокого очага воспаления во время операции (если сроки доставки мате­риалов в лабораторию превышают 15-20 мин, фрагменты тканей погружают в небольшой объем стерильного физраствора).
Не подлежат исследованию на анаэробы: отделяемое поверхностных ран и язв, мазки из зева, носа и ротовой полости,мазки из влагалища и цервикального канала, мокрота и бронхиальные смывы, моча (кроме мочи, полученной надлобковой пункцией мочевого пузыря), содержимое желудка, тонкого и толстого ки­шечника, фекалии (за исключением предполагаемой Clostridium difficile-ассоциированной диареи).

Исследование фекалий на патогенные и условно-патогенные энтеробактерии и дисбактериоз.

  • При исследовании на дисбактериоз пациент за 1-3 дня до взятия пробы должен находиться на диете, исключающей приём продуктов, усиливающих процессы брожения в кишечнике, а также алкоголь, антимикробные лекарственные препараты и т. п. 
  • Фекалии собирают сразу после дефекации из предварительно обработанного дез. раствором и тщательно промытого водой судна, горшка, специального лотка или с пеленки с помощью стерильной стеклянной палочки, проволочной петли или деревянного шпателя. 
  • Порцию фекалий помещают в стерильный флакон. 
  • Объём испражнений для исследования на патогенные энтеробактерии, флору и на дисбактериоз должен составлять 1/3 флакона, объёмом 20 мл. 
  • При наличии в испражнениях патологических примесей (слизь, хлопья, гной) их следует включать в исследуемую пробу. 
  • Материал доставляется в лабораторию в кратчайшие сроки 
  • Испражнения для исследования на патогенные энтеробактерии можно получить непосредственно из прямой кишки с помощью ректальных, ватных или ватно - марлевых тампонов, укрепленных на металлической или деревянной палочке, вводя их круговыми движениями в прямую кишку на 6-8 см. 

Исследование желчи (дуоденального содержимого) при инфекциях желчевыводящих путей

  • Желчь собирают при зондировании в проце­дурном кабинете отдельно по порциям: А, В и С (соответственно дуоденальное содержимое, пузырную желчь и желчь из желчных протоков) в три стерильные пробирки, либо во время оператив­ного вмешательства с помощью шприца в одну про­бирку. 
  • Дуоденальное содержимое и желчь имеют зеленовато - желтый цвет и щелочную реакцию. Кислая реакция, белесоватый оттенок жидкости, наличие хлопьев, свидетельствует о примеси желудочного сока, такой материал не пригоден для исследования. 
  • Полученные порции желчи доставляют в ла­бораторию не позднее 1 -2 ч от момента получения, следя за тем, чтобы пробирки находились в строго вертикальном положении

Микробиологическое исследование грудного молока.

  • Отбор проб грудного молока производится в поликлинике или стационаре в специально выделенном помещении. 
  • Перед сцеживанием молока женщина должна вымыть руки с мылом, тщательно обрабатывает соски и околососковую область молочных желез отдельными ватными тампонами, смоченными 700 спиртом (каждая железа обрабатывается отдельным тампоном). 
  • Молоко из правой и левой молочных желез собирается в отдельную посуду.
  • Первые 5-10 мл сцеженного молока исследованию не подлежат. 
  • Последующие 3-5 мл сцеживаются в стерильные флаконы, которые закрываются стерильными пробками и доставляются в лабораторию не позднее 2-х часов в вертикальном положении во избежании опрокидывания и замачивания пробок. 
  • До момента исследования молоко должно храниться в холодильнике. 
  • Сцеженное накануне молоко исследованию не подлежит.

Правила забора и доставки материала от больных и контактныхв вирусологическое отделение МЛ ГЦГЭ.
Пробы от больных гриппом и ОРВИ

  • Для вирусологического исследования отбирают при первом появлении клинических симптомов, т.е. в остром периоде заболевания (не позднее третьего дня), так как в этот период в носоглотке больного, а также в крови находится максимальное количество вируса. 
  • Пробы немедленно доставляют в вирусологическое отделение МЛ ГЦГЭ (ул. Короля,23, тел. 200-92-51). 
  • Материалом для исследования служат соскоб из носа и мазок из зева, а также сыворотки крови, взятые в начале болезни и в период выздоровления. 

Соскоб из носа.
Необходимо предварительно очистить полость носа от слизи ( взрослым – высморкаться, детям – очистить с помощью ватных турунд). Тампон вводят на глубину 2-3- см до нижней раковины, затем слегка опускают книзу, вводят в нижний носовой ход под нижнюю раковину, делают вращательное движение на пол оборота, таким образом, чтобы в мазке было как можно больше эпителиальных клеток. Удаляют тампон вдоль наружной стенки носовой полости, опускают в пробирку с физиологическим раствором. Палочку обломать, флакон закрыть резиновой пробкой.
Для ранней диагностики краснухи выявляют антиген в клетках цилиндрического эпителия носа от больных или контактных. В качестве материала для исследования служит соскоб из нижнего носового хода (см.п.1- соскоб из носа).
Мазки из зева
Рекомендуется мазки делать до еды. Мазки отобрать при помощи сухого стерильного ватного тампона на палочке, которым протереть поверхность миндалин, задней стенки глотки и небных дужек. Тампон не должен касаться языка и слизистой полости рта. После взятия мазка тампон поместить в среду (розового цвета) во флакон из-под пенициллина, палочку обломать, флакон закрыть резиновой пробкой.

Кровь для серологических исследований

  • Парные сыворотки исследуют для определения прироста титра антител к вирусам (во второй сыворотке по сравнению с первой). 
  • Первую кровь берут в самом начале заболевания, вторую – 10-14 дней спустя. 
  • Кровь в объеме не менее 1 мл берут в чистую центрифужную пробирку, отделяют сыворотку и помешают в пластиковую пробирку, которую хранят в морозильной камере до взятия второй сыворотки от того же больного. 
  • В вирусологическое отделение МЛ обе сыворотки доставляются одновременно. 
  • Результаты исследования зависят от качества доставляемого материала, от сроков забора и своевременной доставки в лабораторию. 

Пробы фекалий
Для обследования контактных с рота -, энтеро-, полиовирусной инфекцииями забирают пробы фекалий массой 1-2 г. в чистый флакон.


Источник: http://sarstedt.com.ua/stati-na-temu/9-pravila-zabora-materiala-dlya-mikrobiologicheskogo-issledovaniya


Закрыть ... [X]

Заболевания носа, симптомы и лечение заболеваний Удаление аденомы вапоризацией

Не получают секрет простаты Не получают секрет простаты Не получают секрет простаты Не получают секрет простаты Не получают секрет простаты Не получают секрет простаты Не получают секрет простаты Не получают секрет простаты Не получают секрет простаты